光合作用和入射光的波长
水下灯的光谱成分在一个给定的水体存在明显差异,在任何指定的深度和深度随水的光学特性(第6章)。因此,为了评估给定水下光场的适用性由不同种类的水生植物进行光合作用,我们需要知道在什么方面的各种植物的光合速率类型取决于光的波长暴露。我们需要的一些信息可以由一家公司提供光谱关于光合作用:这是通过绘制在光合作用范围内一系列波长的入射光的单位入射辐照度(量子m-2s-1)的植物的光合响应曲线。行动光谱通常在足够低的光强度下测量,以确保响应与入射辐照度成正比,即在P - Ed曲线的初始线性区域测量。在这些条件下,任何波长的光合作用速率将等于光子吸收速率乘以量子产率f。对于大型植物的菌体或叶片,光合作用速率为光吸收在给定波长上,与该波长的吸收率成正比。因此,作用谱将具有与吸收谱相似的形状,并被可能发生的任何量子产率随波长的变化所修改(见下文)。
大型植物的作用光谱通常可以在单叶或菌体或其一片上测量,并可以合理地作为原位原始植物利用不同波长光的能力的代表。然而,就浮游植物而言,由于实际原因,必须在含有许多细胞或菌落的悬浮液上测量作用谱:有时,如果要达到合理的速率,则必须在浓缩悬浮液上测量。在悬浮液上确定的作用谱如何与我们希望知道的作用谱(即单个细胞或菌落的作用谱)联系起来?细胞或菌落的作用谱与量子吸收率的谱变化相同,但通常会被量子产率的变化所修正。单个细胞或菌落从光束中吸收量子的平均速率是辐照度和平均值的乘积吸收截面(spAp)的细胞或菌落(§9.4)。因此,单个细胞或菌落的作用光谱将具有与spAp的光谱变化相同的形状(允许f的变化),这是固定的,仅由单个细胞或菌落的吸收特性决定。
相比之下,在实验室中测量的浮游植物悬浮液的作用光谱将具有与整个悬浮液的吸收光谱相同的形状(允许f的变化)。这个光谱的形状不是固定的,是一个函数的细胞/菌落的单位面积的照明光束。由于吸收率只能接近1.0,而且永远不能超过它,因此随着细胞或菌落浓度的增加,弱吸收波长(如绿藻、硅藻等的绿色)的吸收率逐渐接近强吸收波长(如叶绿素红峰)的吸收率。
从它的定义(§3.2)可以得出悬架的dbsorbdnce Dsus等于- 0.434 ln (1 - Asus),其中Asus是悬架的吸收率。由此,它依次得出(因为ln(1 + x)«x,当x«1)对于低值的Asus, Dsus«0.434 Asus。我们在前面(§9.2)看到Dsus = 0.434nspAp,因此在Asus值较低时,Asus ~ nspAp,其中n是每毫升的细胞或菌落数量。单个细胞或菌落的真实作用光谱遵循(允许f的变化)spAp的光谱变化(见上文)。因此,只要在吸收率较低的悬浮液上测量,悬浮液的作用谱将具有与单个细胞或菌落的作用谱大致相同的形状。当华硕的温度分别为0.1、0.2和0.3时,差异分别为5%、11%和19%。误差的一般影响是,与细胞或菌落的真实作用谱相比,悬浮液的作用谱将变平(即峰相对于谷降低)。
最早测量光合作用光谱的是恩格尔曼(1884年)。他用光谱照射海藻组织,然后观察海藻的迁移需氧细菌组织的不同部位。他利用组织不同部位周围细菌的浓度来指示不同颜色的光引发氧气进化的相对能力。虽然这种方法是近似的,但结果确实表明,除了叶绿素之外,其他色素也参与了光合作用。现在,作用光谱的实验室测定最常用的方法是用高强度单色仪作为光源,用铂电极测量O2的析出速率压力测量也被使用,359,360和14二氧化碳的固定.617,803
当通过测定一系列不同波长的速率来测量作用谱时,得到的每单位辐照度的光合速率曲线通常与组织或细胞悬浮液的吸光度曲线有些相似,但不完全相同。图10.6显示了多细胞绿藻、褐藻和红藻547和单细胞绿藻小球藻360的作用光谱和相应的吸收光谱,以及海洋硅藻Skeletonema.617的作用光谱
可以观察到,作用谱下降到以下吸收光谱在某些光谱区域。这意味着,在这些波长下,每单位光吸收的光合作用量较低,即量子产率较低。图10.7显示了蓝绿藻球藻、绿藻小球藻和硅藻中量子产率随波长的函数长波叶绿素的一面(680-710纳米)为红色吸收峰在类胡萝卜素吸收区域(440-520 nm),后者的下降在蓝藻中尤其明显,在绿藻中显著,但在硅藻中变化不大。这些观察结果最初使人们相信,虽然硅藻中类胡萝卜素岩藻黄质吸收的光被有效地用于光合作用,但蓝绿色和绿藻中类胡萝卜素吸收的光的利用效率要低得多。虽然不同色素吸收的光用于光合作用的效率确实存在一些差异,但现在认为这不是导致量子产率下降的主要因素。此外,最初对远红中f的降低提出的解释——即量子的能量不足以产生光合作用——也是不正确的。
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