信息原则
图4植物体内叶绿素荧光(Fo)和光合效率(Fv/Fm)动态棕囊藻属globosa但是此属在病毒感染期间进行荧光检测。开放的符号表示未感染的培养物，而填充的符号表示病毒感染的球形假单胞菌。在加入光系统抑制剂DCMU(终浓度为20 pM)后，获得了最大的荧光(Fm)。Fv等于Fm-Fo。数据以相对单位(r.u.)表示。
Phaeocystis病毒的强大动态表明，除了大量生产外，病毒颗粒也丢失了。清除方法包括将病毒被动吸附到大量的有机聚集体(TEP)上，或吸附到被清除的无机胶体(粘土、沙子)上真光区Kapuscinski和Mitchell 1980;Bruss-aard et al. 2005b)。影响病毒颗粒损失或传染性的其他因素有原生动物的掠食、酶水解和紫外线辐射，因为紫外线辐射破坏病毒核酸(Kapuscinski和Mitchell 1980;Suttle和Chen 1992;González和Suttle 1993;Noble和Fuhrman 1997;Jacquet and Bratbak 2003)。尽管PgV的动态性质和大量损失，但从同一地区收集的相隔一年的PgV分离株的表型特征和分子分析显示了相同的序列，表明这些PgV种群相当稳定
(Brussaard et al. 2004;Baudoux和Brussaard 2005)。此外，PgV在球形P. globosa宿主丰度非常低或无法检测到的时期被分离出来，表明这组强大的病毒在Phaeocystis发生的沿海地区的水柱中一直存在。
棕囊藻病毒的多样性及其生态作用
要成功感染一种病毒，依赖于接触率，从而依赖于宿主物种的丰度。然而，Phaeocystis病毒分离株不仅具有受种限制的宿主范围，而且通常还具有株特异性感染谱(Jacobsen等，1996;Baudoux和Brussaard 2005)。因此，并非所有Phaeocystis种的菌株(例如，P. globosa)都会被感染，即使在同一水体中共存。影响这一点的因素是病毒与适当宿主细胞最佳结合的能力，以及宿主对感染的敏感性。
根据结构衣壳蛋白组成，起源于北海南部的12株PgV可分为两类(Baudoux and Brussaard 2005)。游离病毒表面的蛋白质作为病毒与细胞附着的一种手段，并允许病毒基因组转移到宿主细胞中。病毒之间这些结构蛋白组成的任何变化都可能影响与宿主细胞受体的结合，选择宿主范围限制。
考虑到这些不同的PgV分离株及其藻类宿主菌株来源于相同的水样，这种病毒-宿主多样性的生态影响是有趣的。特定PgV的感染不仅在总宿主种群水平上起作用，而且在亚种群水平上起作用。这种病毒多样性的基本优势可能是促进共存的球形P. globosa菌株，以保证藻类宿主的可用性。如果一个(主要的)菌株被感染并发生裂解，另一个具有抗性的菌株，例如，可能不太适合竞争营养物质的菌株，可以填补生态位。受感染的球形假单胞菌菌株的裂解
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